Ureaplasma parvum, comme cause de la …

Ureaplasma parvum, comme cause de la ...

Ureaplasma parvum comme une cause de la plaie sternale Infection▿

Peu de rapports dans la littérature ont démontré l’isolement de Ureaplasma espèces de plaies sternales. Un cas d’infection de la plaie sternale probablement due à Ureaplasma parvum est décrit. Lorsque des cultures bactériennes de routine d’une infection de la plaie sternale ne parviennent pas à produire un agent pathogène, les tests de diagnostic pour les mycoplasmes et uréaplasmes doit être envisagée.

RAPPORT DE CAS

A 66 ans, de sexe masculin autochtone présenté à un hôpital de soins tertiaires à Winnipeg, Manitoba, Canada, avec un épisode de douleur thoracique qui a été soulagée par la nitroglycérine. Ses antécédents médicaux a été significative pour les maladies connues de cardiopathie ischémique, l’hyperlipidémie, l’hypertension artérielle, diabète de type 2, de la tuberculose à distance, et l’arthroplastie du genou bilatérale. Les analyses de laboratoire effectuées au moment de l’arrivée (et répétées 18 h plus tard) ont démontré un niveau de troponine T lt; 0,01 pg / litre. Le patient a été admis dans le service de cardiologie avec un diagnostic de l’angine de poitrine instable. Le traitement par l’héparine a été initiée.

Une coronarographie réalisée deux jours après son admission a montré 70% de sténose de l’artère descendante antérieure gauche coronaire, une occlusion complète de l’artère coronaire droite, et une fraction d’éjection de 44%. Après consultation avec un chirurgien cardiaque, le patient a subi trois vaisseaux pontage coronarien greffage. Cefazolin a été administré avant la procédure, et le traitement a été poursuivi pendant 5 jours postopératoires. Le patient a été transféré hors de l’unité de soins intensifs chirurgicaux à la chirurgie cardiaque division générale le jour postopératoire 1. Son évolution postopératoire a été compliquée par iléus que spontanément résolu sur plusieurs jours. Le jour postopératoire 5, il a développé une nouvelle apparition de la fièvre de 38,6 ° C et l’augmentation de l’essoufflement. Il a également été d’avoir séries de tachycardie ventriculaire soutenue. Le jour postopératoire 6, il a été réadmis à l’unité de soins intensifs chirurgicaux avec un diagnostic de pneumonie possible. antibiothérapie empirique avec pipéracilline-tazobactam a été lancé. Son état stabilisé au cours des prochains jours. Les cultures de sang ont été négatifs.

Le jour postopératoire 10, écoulement purulent de la plaie sternale a été observée. Sternum a également été jugée instable à l’examen clinique. Un coffre tomodensitométrie a démontré échouement des tissus mous et fluide autour du sternum, en accord avec les changements postopératoires attendus. Aucune preuve définitive de l’ostéomyélite a été noté. Un prélèvement de la plaie du drainage sternale a été envoyé au laboratoire de microbiologie au premier jour postopératoire 10. Une coloration de Gram a démontré au plus leucocytaire un polynucléaires par champ d’immersion dans l’huile. Aucune bactérie ont été isolées sur la culture. Un second tampon de plaie, soumise le jour postopératoire 11, n’a pas donné la croissance bactérienne.

Le jour postopératoire 15, en raison de l’instabilité sternale et écoulement purulent continue de la plaie sternale, le patient a été ramené à la salle d’opération. L’incision sternale a été ouverte, et une quantité importante de pus a été drainé. Les bords du sternum ont été avivés, et les fils ont été retirés sternale. La plaie a été refermée avec des fils en acier inoxydable. Compte tenu de l’absence de cultures positives à ce jour, un tampon de plaie pour mycoplasmes / ureaplasma a été obtenu.

Pour l’isolement des mycoplasmes et Ureaplasma, des tampons enroulés ont été inoculées dans un bouillon bleu de bromothymol (bouillon B), préparé comme décrit par Robertson (14), mais sans lincomycine. Dans une autre variante au bouillon décrit par Robertson, l’arginine a été ajoutée pour permettre la détection d’ mycoplasma hominis en plus de Ureaplasma espèce. protocole de laboratoire actuel dans notre institution est pour le bouillon de B à incuber pendant 5 jours à 37 ° C. Broth qui subit un changement de couleur au vert est soumis à une nouvelle évaluation par des tests de PCR.

Détection moléculaire a été réalisée initialement en utilisant trois PCR séparées pour tester M. hominis. Ureaplasma espèces, et les membres du Mycoplasma groupe avec des amorces décrites précédemment par Abele-Horn et al. et van Kuppeveld et al. (1. 15). En bref, une petite aliquote du bouillon de B (0,5 ml) a été placée dans un microtube stérile et centrifugée à 5000 tpm pendant 5 min à 4 ° C. Une aliquote de 2,5 ul de surnageant a été ensuite ajouté 47,5 pi de mélange maître (composé de 0,5 pM de chaque amorce, 2,5 unités d’ Taq polymerase, 0,5 unités d’ADN glycolase uracile, 0,2 mM de dATP, dCTP et dGTP, 0,6 mM de dUTP, 0,1 mM de dTTP, 2,5 mM MgCl2. 5 pi de tampon 1 × PCR, et de l’eau distillée stérile). L’amplification a été réalisée avec un thermocycleur Eppendorf (Eppendorf AG, Hambourg, Allemagne), comportant 40 cycles à 94 ° C pendant 30 s, 55 ° C pendant 30 s et 72 ° C pendant 60 s. Les produits d’amplification ont été visualisés sous lumière UV après avoir été sur un gel d’agarose à 1,5% (poids / volume) contenant 25 pg de bromure d’éthidium. organismes de contrôle effectués à chaque PCR comprennent Ureaplasma souche ATCC 27618, M. hominis ATCC 23114, et Escherichia coli ATCC 25922 (contrôle négatif).

la plaie de la tige du patient a donné Ureaplasma espèces, mises en évidence par la présence du produit de PCR à la fois le Mycoplasma amorces de groupe et la Ureaplasma amorces d’espèces. Le bouillon subculture B a été expédié congelé sur glace sèche à l’Université d’Alabama à Birmingham Diagnostic Mycoplasma laboratoire pour une caractérisation génotypique et les tests de sensibilité aux antimicrobiens.

L’ADN génomique à partir de la Ureaplasma subculture a été extraite par centrifugation 200 pi de culture à 14.000 × g pendant 20 min à 4 ° C; le culot a été digéré avec 200 ul de proteinase K (1 mg / ml) du tampon de lyse pendant 1 h à 60 ° C. Proteinase K a ensuite été inactivée par incubation à 95 ° C pendant 5 min. L’identification de l’isolat au niveau de l’espèce a été réalisée par une PCR multiplex en temps réel basé sur les gènes hypothétiques et OFR00127 UU063 comme décrit précédemment (8). Le test PCR a démontré que l’organisme était Ureaplasma parvum. Après la détermination de l’espèce, quatre essais de PCR en temps réel ont été effectuées comme décrit par Xiao et al. (18), qui détermine l’organisme à serotype 6. MICs déterminée par microdilution de bouillon comme décrit par Waites et al. (16) ont été de 0,5 pg / ml de doxycycline, 1,0 pg / ml de tetracycline, 1,0 pg / ml lévofloxacine et 1,0 ug / ml d’érythromycine.

17 jours après l’intervention, le traitement avec 500 mg de ciprofloxacine administrée par voie orale deux fois par jour a été initié en réponse à la détection d’ Ureaplasma. Le traitement par pipéracilline-tazobactam a été abandonnée le jour postopératoire 21. Dans le même temps, 100 mg de doxycycline administrée par voie orale deux fois par jour a été ajouté à la ciprofloxacine de fournir d’autres Ureaplasma couverture. Par jour postopératoire 28, la plaie sternale du patient a été cliniquement améliore. Le patient a été déchargé de l’hôpital sur une combinaison de ciprofloxacine et la doxycycline. Compte tenu de la possibilité d’une atteinte osseuse sternale basée sur la présentation clinique, il a été décidé de poursuivre le traitement pendant au moins 3 mois. Le patient a ensuite été évaluée dans un suivi 1 mois après la décharge. A cette époque, sa plaie sternale semblait guérir bien.

Ureaplasma parvum appartient à la classe Mollicutes (17). Ureaplasma spp. apparaissent sous forme de cellules coccoïdes, allant de 0,2 à 0,3 pm de diamètre (17). Comme les autres membres de la classe Mollicutes. Ureaplasma spp. manque une paroi cellulaire et, par conséquent, ne peut pas être visualisé par coloration de Gram. La culture peut être utilisée pour identifier Ureaplasma spp. dans le laboratoire de microbiologie clinique. La présence de stérols est nécessaire pour la croissance. Les médias qui peuvent être utilisés pour l’isolement comprennent le bouillon 10B de Shepard et l’agar A8 (17). Le temps de génération pour Ureaplasma spp. est d’environ 1 heure, et la plupart des cultures seront positives en 2 à 4 jours. Sur des plaques d’agar, les colonies de Ureaplasma spp. sont de petite taille (15 à 60 um) et à faible grossissement au microscope est nécessaire pour la visualisation (17). Ureaplasma spp. peut être distingué d’autres mycoplasmes humains par leur capacité à hydrolyser l’urée (17). L’identification peut également être obtenue par des méthodes moléculaires, comme décrit dans le cas présenté ici. Les antimicrobiens les plus actifs in vitro contre le Ureaplasma spp. sont les macrolides, les fluoroquinolones, les tétracyclines et (17).

Ureaplasma spp. coloniser le tractus génito-urinaire inférieur chez 40 à 80% des femmes sexuellement actives (11). Ces organismes ont été impliqués comme agents étiologiques causant urétrite non gonococcique, mortinatalité / accouchement prématuré, la bactériémie post-partum, et après une césarienne infection de la plaie (3. 7. 12. 13). Ils ont également été associés au développement d’une pneumonie néonatale, la méningite, et des maladies pulmonaires chroniques (8. 11. 17). Il y a des rapports de cas Ureaplasma spp. en tant que cause d’une méningite, une infection du greffon aortique, et un abcès intra-rénal chez l’adulte (4. 6. 9).

À ce jour, il y a eu peu de rapports de Ureaplasma spp. comme une cause de la plaie sternale infection / médiastinite. Une revue de la littérature de langue anglaise a abouti à trois cas supplémentaires au-delà de celui présenté ici (2. 5. 10). Pigrau et al. décrit un homme de 63 ans qui a développé une infection de la plaie sternale 7 jours après la chirurgie de pontage coronarien (10). Tous les deux M. hominis et Ureaplasma spp. ont été isolés à partir de cultures prises au moment de drainage de plaie chirurgicale. Le patient a répondu à la thérapie d’association avec la clindamycine, la gentamycine, et la doxycycline (10). García-de-la-Fuente et al. publié un cas d’un homme de 77 ans qui a développé sternal déhiscence de la plaie, médiastinite, épanchement pleural et épanchement péricardique après le remplacement de la valve aortique (5). Cultures ont démontré à la fois M. hominis et Ureaplasma spp. Ce patient est légèrement améliorée en réponse à la thérapie avec la clindamycine et la doxycycline. Cependant, il a ensuite développé un saignement gastro-intestinal et est mort (5). Enfin, Boyle et al. ont rapporté le cas d’un homme de 48 ans qui a développé un sternum instable avec de la fièvre associée et leucocytose 30 jours post-transplantation cœur-poumon (2). Médiastinite a été diagnostiqué au moment de débridement sternal. cultures de plaies ont démontré une croissance forte de M. hominis et une croissance modérée de Ureaplasma spp. L’infection a été traitée avec succès par une combinaison de la doxycycline et de l’érythromycine (2). Dans chacun de ces trois cas, Ureaplasma spp. ont été isolés en association avec M. hominis. Le cas décrit dans le présent rapport est unique dans le respect que U. parvum était le seul organisme détecté.

Tous les rapports de Ureaplasma infections publiées avant 2003 ont utilisé la désignation de Ureaplasma urealyticum. mais depuis ce temps, le genre a été subdivisé en deux espèces distinctes: U. urealyticum. qui comprend les sérotypes 2, 4, 5, 7, 8, 9, 10, 11, 12 et 13, et U. parvum. qui comprend les sérotypes 1, 3, 6 et 14 (17). Il y a débat quant à l’existence d’pathogénicité différentielle entre les deux espèces ou entre les différents sérotypes, mais cela n’a pas été réglée (17). U. parvum tend à être le plus commun des deux espèces dans la plupart des échantillons cliniques (18). La seule méthode pour différencier les deux espèces les unes des autres à travers l’utilisation de l’analyse par PCR. En raison de la disponibilité limitée des tests de PCR et l’incertitude de l’importance de différencier les deux espèces et leurs sérotypes respectifs, la détermination des espèces est pas effectuée régulièrement à des fins de diagnostic, mais peut être utile pour caractériser les isolats invasifs et à des fins épidémiologiques (17).

Il existe plusieurs limites à l’affaire présentée ici. Tout d’abord, le patient n’a pas eu un prélèvement urétral soumis à Ureaplasma la culture, de sorte que la source de l’organisme dans sa blessure reste incertaine. Deuxièmement, la thérapie antimicrobienne a été lancé avant sternale écouvillons enroulées envoyés pour la culture bactérienne de routine. Cela peut avoir nui à notre capacité à identifier les bactéries le plus souvent associés à une infection de la plaie sternale. Enfin, des cultures bactériennes de routine ne sont pas envoyés au moment de débridement sternal, ce qui limite encore une fois notre capacité d’attribuer l’infection actuelle entièrement à Ureaplasma. On ne sait pas si Ureaplasma spp. jamais coloniser les plaies sternales. La fréquence des uréaplasmes comme agents pathogènes dans les seuls ou en association avec d’autres agents pathogènes plus fréquemment reconnus infections de plaie sternale est également inconnu puisque ces organismes sont rarement recherchés, sauf que dans ce cas, lorsque l’infection persiste sans étiologie apparente et ne montre aucune réponse à la ß-lactamines des antibiotiques. Dans notre institution, nous ne réalisons pas systématiquement des tests de diagnostic pour les deux M. hominis ou Ureaplasma spp. dans le contexte de l’infection de la plaie sternale.

En résumé, ce rapport décrit un cas d’infection de la plaie sternale probablement due à U. parvum. Pour les patients atteints d’une plaie sternale infection / médiastinite pour lesquelles des cultures bactériennes de routine sont négatives, il faudrait envisager des tests de diagnostic pour la poursuite M. hominis et Ureaplasma spp. D’autres recherches sont nécessaires pour déterminer si Ureaplasma spp. jamais se produire en tant que colonisateur des plaies sternales non infectées ou des plaies infectées avec d’autres agents pathogènes bactériens les plus courants.

REMERCIEMENTS

Amy Ratliff et Donna Crabb ont fourni une assistance technique dans l’exécution des tests de PCR et la détermination des CMI à l’Université d’Alabama à Birmingham.

RELATED POSTS

  • Ureaplasma parvum, Ureaplasma parvum std.

    Tag Archives: Ureaplasma parvum # 8220; I # 8217; ne suis pas petite, je # 8217; m juste simplifié! # 8221; Image de mycoplasma genitalium adapté de l’American Society for Microbiology. En…

  • Ureaplasma infection parvum modifie …

    Ureaplasma parvum infection modifie la dynamique filamine d’un dans des cellules hôtes Abstrait Contexte uréaplasmes sont parmi les bactéries les plus communes isolées du tractus urogénital…

  • La découverte du VIH comme la cause …

    La découverte du VIH comme cause du SIDA Les progrès réalisés dans la recherche scientifique suit rarement un chemin droit. En général, cela implique de nombreux méandres inattendus, avec un…

  • Quelles sont les causes de la diarrhée liquide, ce qui cause la diarrhée liquide.

    La diarrhée La diarrhée est le passage des selles molles ou liquides 3 ou plusieurs fois par jour avec ou sans inconfort. Cela se produit lorsque l’eau dans l’intestin est pas absorbé dans le…

  • Ureaplasma – Il y a espoir, d’où vient ureaplasma viennent.

    On dirait que vous pouvez vous une souche résistante aux antibiotiques de U. urealyticum, DMH2015 avoir. Certains Ureaplasma spp. ont formé une résistance aux deux macrolides et les…

  • Ureaplasma parvum infection_4

    La présence d’espèces de bactéries dans le sperme et la qualité du sperme 1 Département des sciences biomédicales, biologie Section, Centre Interdépartemental pour la recherche et la thérapie…

Laisser un commentaire